MỤC LỤC
CHưƠNG TRANG
Trang tựa
Lời cảm ơn . iii
Tóm tắt .iv
Summary . v
Mục lục .vi
Danh sách các chữ viết tắt . x
Danh sách các hình .xi
Danh mục các bảng . xii
Chương 1. MỞ ĐẦU . 1
Chương 2.TỔNG QUAN TÀI LIỆU . 3
2.1. Lịch sử phát hiện và sử dụng Spirulina platensis . 3
2.1.1. Lịch sử phát hiện . 3
2.1.2. Tình hình nghiên cứu Spirulina platensis trong – ngoài nước . 4
2.1.2.1. Tình hình nghiên cứu tại Việt Nam . 4
2.1.2.2. Tình hình nghiên cứu trên Thế Giới . 5 
2.2. Spirulina và những vấn đề liên quan . 7
2.2.1. Giới thiệu về Spirulina. 7 
2.2.2. Đặc điểm sinh lí của Spirulina platensis . 8
2.2.2.1 Phân loại . 8
2.2.2.2. Đặc điểm sinh lý . 9 
2.3. Kỹ thuật sản xuất Spirulina platensis . 11
2.3.1. Sơ đồ qui trình sản xuất Spirulina platensis . 11
2.3.2. Các yếu tố ảnh hưởng đến Spirulina. 11
2.4. Thành phần dinh dưỡng và công dụng của Spirulina platensis . 17
2.4.1. Thành phần dinh dưỡng . 17 
2.4.2. Công dụng của vi khuẩn lam Spirulina platensis . 18
2.5. Ứng dụng Spirulina platensis trong thực phẩm, xử lý môi trường
y học và mỹ phẩm . 20
2.5.1. Ứng dụng trong thực phẩm . 20
2.5.2. Ứng dụng trong xử lí môi trường . 21
2.5.3. Ứng dụng trong y học . 23
2.5.4. Ứng dụng trong mỹ phẩm . 24 
2.6. Kỹ thuật sản xuất nước giải khát . 24 
2.6.1 Khái niệm về nước giải khát . 24
2.6.2 Quy trình sản xuất nước giải khát . 25
2.6.2.1 Nguyên liệu . 25
2.6.2.2 Diễn giải quy trình công nghệ . 26
2.6.3. Kỹ thuật sản xuất nước khoáng Vĩnh Hảo . 27 
2.6.4. Kỹ thuật sản xuất nước tinh khiết . 27
2.6.5. Kỹ thuật sản xuất rượu trái cây . 27
Chương 3. VẬT LIỆU VÀ PHưƠNG PHÁP . 28
3.1. Thời gian và địa điểm tiến hành đề tài . 28
3.1.1. Thời gian . 28
3.1.2. Địa điểm . 28
3.2. Nguồn cung cấp nguyên liệu . 28
3.3. Đối tượng nghiên cứu . 28
3.4. Vật liệu . 28
3.4.1. Thiết bị . 28
3.4.2. Hoá chất . 29
3.5. Các phương pháp phân tích . 29
3.5.1. Phương pháp xác định nitơ tổng số bằng phương pháp Kjeldahl
3.5.1.1. Nguyên tắc . 29
3.5.1.2. Quá trình thực hiện . 30
3.5.2. Phương pháp xác định protein bằng phương pháp Lowry . 33 
3.5.2.1. Nguyên tắc . 33
3.5.2.2. Thực hành. 34 
3.5.3. Phương pháp xác định tro tổng số . 35
3.5.3.1. Nguyên tắc . 35
3.5.3.2. Thực hành. 35
3.5.4. Phương pháp phân tích vi sinh. 36 
3.5.4.1. TPC . 36
3.5.4.2. Coliforms . 37
3.5.4.3. E.coli . 37
3.5.4.4. Staphylococcus aureus . 37
3.5.4.5. Salmonella . 37
3.6. Phương pháp phá vỡ tế bào . 38
3.6.1. Phương pháp vật lí . 38
3.6.2. Phương pháp khuếch tán . 38
3.7. Phương pháp bổ sung . 39
3.8. Phương pháp cảm quan . 39
3.9. Bố trí thí nghiệm . 39
3.10. Phương pháp xử lý số liệu . 39
Chương 4. KẾT QUẢ VÀ THẢO LUẬN . 40
4.1. Thành phần dinh dưỡng vi khuẩn lam Spirulina platensis . 40
4.1.1. Xác định hàm lượng protein theo phương pháp Kjeldahl . 40
4.1.1.1. Xác định hàm lượng protein trong bột tảo khô . 40
4.1.1.2. Xác định hàm lượng protein trong bã tảo . 41
4.1.2. Xác định hàm lượng protein theo phương pháp Lowry . 41
4.1.2.1. Protein Chuẩn . 41
4.1.2.2. Hàm lượng protein trong dịch tảo . 43
4.1.3. Xác định hàm lượng tro tổng số trong bột tảo khô . 44
4.2. Nghiên cứu các phương pháp phá vỡ tế bào . 45
4.2.1. Đánh giá hiệu quả phá vỡ tế bảo bằng cách xác định hàm
lượng protein theo phương pháp Kieldahl . 45 
4.2.1.1. Phá vỡ tế bào theo phương pháp khuếch tán (PPKT) . 45
4.2.1.2. Theo phương pháp vật lý (PPVL) . 45
4.2.2. Đánh giá hiệu quả phá vỡ tế bào bằng cách xác định hàm
lượng protein theo kết quả thu nhận protein theo phương pháp Lowry. 46
4.2.2.1. Phá vỡ tế bào theo phương pháp khuếch tán . 46
4.2.2.2. Phá vỡ tế bào theo phương pháp vật lý . 48
4.3. So Sánh Kết Quả Protein . 51
4.3.1. Phá vỡ và không phá vỡ tế bào . 51
4.3.2. Phá vỡ theo nồng độ đường và thời gian . 53
4.3.3. Phá vỡ theo nồng độ đường (phương pháp khuếch tán) . 54
4.3.4. Phá vỡ theo thời gian (phương pháp vật lí) . 55
4.4. Kết quả phân tích vi sinh . 55
4.5. Hiệu suất phá vỡ tế bào tảo Spirulina platensis . 56
4.6. Nghiên cứu chọn tỉ lệ bổ sung vi khuẩn lam Spirulina platensis . 58
4.7. Đánh giá chất lượng sản phẩm . 59
Chương 5. KẾT LUẬN VÀ ĐỀ NGHỊ . 60
Chương 6. TÀI LIỆU THAM KHẢO . 61 
Phụ Lục . 64
 
                
              
                                            
                                
            
 
            
                 83 trang
83 trang | 
Chia sẻ: leddyking34 | Lượt xem: 4158 | Lượt tải: 1 
              
            Bạn đang xem trước 20 trang tài liệu Khóa luận Nghiên cứu phương pháp chiết xuất dịch từ sinh khối vi khuẩn Lam Spirulina platensis bổ sung vào nước giải khát, để xem tài liệu hoàn chỉnh bạn click vào nút DOWNLOAD ở trên
rƣờng lỏng chuẩn bị nhƣ trên 
nhƣng không có thạch. 
Các ống thạch nghiêng hoặc các bình tam giác chứa môi trƣờng lỏng giữ 
giống Spirulina có thể cất giữ ở nơi có nhiệt độ mát <150C hoặc ở nhiệt độ 40C 
nhƣng cƣờng độ ánh sáng phải thấp 300 – 500 lux sau 30 – 40 ngày thì cấy lại. 
Nhân giống chuẩn bị trồng ngoài trời. Cho môi trƣờng đã chuẩn bị vào bình 
thuỷ tinh có thể tích từ 2 - 5 lít. Lấy 10 ml dịch Spirulina hay lấy Spirulina từ 2 
ống thạch nghiêng thêm vào mỗi bình trên. Giữ các bình này dƣới đèn huỳnh 
quang và đèn sợi đốt hay ngoài trời đƣợc che bóng có cƣờng độ ánh sáng khoảng 
3 – 10 Klux. Các bình trên mỗi ngày lắc vài lần. Sau 8 – 10 ngày là có lƣợng 
Spirulina để nhân ra bể ngoài trời. 
+ Nuôi trồng Spirulina ra bể: Dùng 20 lít Spirulina nhân giống trong 
bình để nhân ra bể 20 m3. Các bể mới cấy Spirulina ra có mật độ loãng phải che 
bớt ánh sáng để ánh sáng còn lại khoảng 5000 lux. Khi Spirulina trong bể đặc thì 
không cần che nữa. 
Để không phải che bể lúc mới gieo Spirulina vào thì phải tiến hành cấy với 
mật độ cao và khuấy sục để môi trƣờng di chuyển với tốc độ 20 cm/giây. Từ bể 
này lại nhân Spirulina sang bể tiếp theo, cần nhân Spirulina vào bể sau khi mặt 
trời lặn để Spirulina thích nghi qua đêm trƣớc khi quang hợp của ngày hôm sau. 
- Thu hoạch Spirulina: 
Sau khi các bể đã nhân đủ Spirulina thì chúng sẽ sinh trƣởng tăng sinh khối 
và tăng mật độ. Định kỳ khoảng 2 ngày hoặc hơn tuỳ theo tình trạng của các bể 
mà thu hoạch bớt và giữ lại mật độ không thấp hơn 0,6 – 0,8 g/l. Mỗi lần thu 
16 
hoạch cần tiến hành bổ sung chất dinh dƣỡng cho môi trƣờng. Cần bổ sung nƣớc 
đến độ sâu đã quy định. 
Sau thời gian sinh trƣởng từ 1 – 2 tháng do môi trƣờng bị thay đổi vì các 
chất dinh dƣỡng không còn giữ đƣợc cân bằng giữa các yếu tố dinh dƣỡng nhƣ 
ban đầu, mặt khác Spirulina tiết ra môi trƣờng các chất kích thích sinh trƣởng và 
các chất kìm hãm sinh trƣởng nên năng suất và phẩm chất của Spirulina giảm 
dần, lúc đó phải thay môi trƣờng và nhân Spirulina lại từ đầu. 
Tại hồ Texcoco ở Mêhicô Spirulina trồng diện tích lớn nên thu hoạch theo 
quy mô công nghiệp, gồm các công đoạn: 
Làm đặc sơ bộ. 
Lọc bằng trọng lực và chân không. 
Làm vỡ tế bào. 
Sấy khô. 
Nghiền. 
Đóng gói. 
Tại Vĩnh Hảo - Bình Thuận Spirulina sau thu hoạch sẽ đƣợc lọc qua vải sợi 
bông và rửa sạch bằng máy rồi đem ly tâm tốc độ 800 vòng/phút loại bớt nƣớc để 
thu sinh khối. 
Sấy khô: là công đoạn quan trọng và là khâu cuối cùng của quá trình sản 
xuất Spirulina nói chung. Spirulina có thành tế bào mỏng nên thuận lợi cho việc 
sấy sẽ nhanh khô. 
Ấn độ đã tiến hành thử nghiệm nhiều phƣơng pháp sấy khác nhau, trong đó 
phơi nắng cho thấy sản phẩm sau khi sấy đều tốt và đẹp. 
Tại Vĩnh Hảo, đã sử dụng phƣơng pháp phơi khô ngoài nắng. Buổi sáng thu 
hoạch và phơi khô suốt ngày. Trong điều kiện không thuận lợi về thời tiết phải 
phơi bổ sung ngày hôm sau. Spirulina thu đƣợc theo phƣơng pháp này còn 7 – 
8% độ ẩm, sau đó đem nghiền thành bột và cất giữ lâu hàng năm mà vẫn không 
bị mốc. 
17 
- Xử lý nƣớc thải sau thu hoạch: 
Sau mỗi lần lọc để thu hoạch, nƣớc qua lọc cần cho lại vào bể để tiết kiệm 
môi trƣờng. Lúc thay toàn bộ môi trƣờng và nhân Spirulina lại từ đầu cần tận thu 
Spirulina còn lại trong môi trƣờng đó. 
2.4. Thành phần dinh dƣỡng và công dụng của Spirulina platensis 
2.4.1. Thành phần dinh dƣỡng [18,33] 
Spirulina còn có tên thƣơng mại là Arthrospira platensis mà đƣợc nuôi 
trồng trên thế giới nhƣ một nguồn thực phẩm, chúng rất giàu dinh dƣỡng. Hiện 
nay đƣợc phổ biến nhƣ là thực phẩm bổ dƣỡng tại US và Europe. 
Protein: 55% - 70% 
Giàu các vitamin: vitamin A, B1, B2, B3, B6, B12, vitamin C, vitamin D, 
vitamin E, folate, vitamin K, biotin, axit pantothenic, beta carotene - tiền chất của 
vitamin A, inositol. 
Giàu các chất khoáng: Canxi, mangan, sắt, chromium, photpho, magiê, 
selen. 
Giàu các sắc tố: phycocyanin, chlorophyll, carotenoid và xanthophyll và các 
sắc tố khác. 
Các hợp chất hữu cơ: axit gamma linoleic, glycolipid, các polysaccharide. 
Các axit amin: isoleucine, phenylalanine, leucine, threonine, lysine, 
tryptophan, methionine, valine, alanine, glycine, arginine, histidine, axit aspartic, 
proline, cystine, serine, axit glutamic, tyrosine. 
Đặc biệt chúng chứa nhiều axit amine không thay thế mà động vật không 
thể tự tổng hợp đƣợc. 
Vì vậy Spirulina đƣợc nuôi trồng rất phổ biến trên thế giới, đƣợc sử dụng 
vào nhiều mục đích khác nhau: Y - Dƣợc, mỹ phẩm, thực phẩm, nông nghiệp, 
thủy sản và đƣợc coi là thức ăn con ngƣời trong tƣơng lai. 
18 
2.4.2. Công dụng của vi khuẩn lam Spirulina platensis [34,35,36,37] 
Protein chất lƣợng cao 
Spirulina là một loại tảo đơn bào nhỏ dạng xoắn ốc, chứa protein cân bằng, 
hoàn chỉnh và nhiều chất dinh dƣỡng có giá trị. Spirulina chứa khoảng 70% 
protein dễ tiêu, lƣợng protein này cao hơn bất kì loại thực phẩm nào khác. 
Ngoài ra thành phần của tảo Spirulina còn chứa 18/22 axit amin, tất cả 
những axit amin cần thiết này tạo thành nguồn thực vật duy nhất hoàn chỉnh về 
protein. Hơn nữa, protein trong Spirulina dễ tiêu hóa hơn so với các nguồn thịt. 
Thực vậy, protein thịt bò đƣợc ƣớc lƣợng chỉ dễ tiêu 20%, trong khi protein 
Spirulina là 95%. Spirulina không những là thực phẩm tuyệt vời giúp cơ thể dễ 
dàng hấp thụ protein chất lƣợng cao mà còn chứa các men tự hỗ trợ quá trình tiêu 
hóa. 
Chất giàu dinh dƣỡng tự nhiên 
Nguồn dinh dƣỡng thực phẩm tự nhiên hoàn chỉnh đƣợc tìm thấy trong thực 
phẩm này là Spirulina cho ta những điều lợi ích vô tận về sức khỏe, Spirulina có 
lƣợng beta-carotene cao - tiền chất của vitamin A gấp 25 lần cà rốt, đây là chất 
chống oxy hóa mạnh, bảo vệ cơ thể khỏi những tổn hại cơ bản. Không giống 
vitamin A tổng hợp và dầu gan cá, beta-carotene hoàn toàn không độc hại, thậm 
chí khi sử dụng với số lƣợng lớn. 
Spirulina giàu vitamin A dễ chuyển hóa, cần thiết cho mắt, làn da, răng, 
móng, tóc, xƣơng và một hệ thống miễn dịch tốt, bảo vệ cơ thể khỏe mạnh. 
Spirulina là một nguồn cung cấp vitamin B tuyệt vời, cụ thể là vitamin B12, 
quan trọng với ngƣời ăn chay, gấp 2 – 6 lần gan bò sống. Thực phẩm dinh dƣỡng 
này cũng chứa vitamin E, là nguồn sắt cao, chứa 14 chất khoáng tự nhiên và 
nhiều nguyên tố vi lƣợng. 
Siêu thực phẩm cho ngƣời ăn kiêng 
Spirulina là một trong những thực phẩm giàu dinh dƣỡng nhất, chứa ít chất 
béo và cholesterol. Nhiều ngƣời nhận thấy rằng khi họ dùng Spirulina trƣớc bữa 
ăn sẽ làm giảm sự thèm ăn của họ, cho phép họ giảm nhu cầu ăn thêm thức ăn 
19 
nhƣng vẫn không thấy đói, cách này thích hợp cho ngƣời ăn kiêng. Đối với 
những ngƣời suy dinh dƣỡng, cần tăng trọng cách tốt nhất là bổ sung Spirulina 
sau mỗi bữa ăn. Chất dinh dƣỡng sẽ đƣợc tích lũy lại, giúp ngƣời suy dinh dƣỡng 
mau chóng phục hồi. Loại siêu thực phẩm này có thể là một thành phần giá trị 
của bất kì chƣơng trình tăng hoặc giảm cân sức khỏe nào. Spirulina cũng là 
nguồn cung cấp carbohydrate phức hợp tuyệt vời, nó chứa glycogen và 
rhamnose, dễ đƣợc cơ thể hấp thu và biến đổi nhanh chóng thành năng lƣợng. 
Thực phẩm dinh dƣỡng protein cao, ít calo này cung cấp năng lƣợng chúng ta 
cần mỗi ngày. 
Hỗ trợ miễn nhiễm tự nhiên 
Spirulina chứa đựng nhiều chất dinh dƣỡng cần thiết cho sự miễn nhiễm tối 
ƣu nhƣ GLA, beta-carotene và các carotenoid khác. Lƣợng dầu chứa GLA gấp 3 
lần so với dầu cây anh thảo. Nghiên cứu đã tìm ra GLA giúp làm giảm bệnh 
huyết áp cao và giảm lƣợng cholesterol trong máu, làm dễ chịu các trƣờng hợp 
viêm khớp, các cơn đau tiền kinh nguyệt, bệnh chàm và các bệnh khác về da. 
Spirulina đƣợc nghiên cứu rộng rãi nhằm công bố đặc tính tăng cƣờng miễn 
nhiễm, các nghiên cứu cho thấy Spirulina có thể làm tăng mức độ kháng thể và 
hoạt động đại thực bào, cả hai đều quan trọng đối với một hệ thống miễn nhiễm 
mạnh mẽ, nó cũng giúp cân bằng hoạt động hệ thống miễn nhiễm của bạn. 
Lọc và giải độc 
Còn một lí do khiến Spirulina quan trọng vì chúng chứa diệp lục gấp nhiều 
lần so với cỏ linh lăng hoặc lúa mì. Chất diệp lục là sắc tố giúp thực vật có màu 
xanh và rất trong sạch, với nhiệm vụ là làm sạch hệ thống kim loại nặng và các 
độc tố khác trong cơ thể có hại cho sức khỏe. Những năm qua, nhiều ngƣời mong 
muốn làm thanh khiết cơ thể đã ăn kiêng định kì bằng Spirulina. 
20 
2.5. Ứng dụng Spirulina platensis trong thực phẩm, xử lý môi trƣờng y học 
và mỹ phẩm [37,45] 
2.5.1. Ứng dụng trong thực phẩm 
Từ những năm 1970, ở Nhật Bản và ở Mỹ, tảo Spirulina đã đƣợc xem là 
một loại siêu thực phẩm. Đến những năm 1990 vấn đề tiêu thụ Spirulina đã phát 
triển vƣợt bậc tại Trung Quốc, Ấn Độ, Châu Á, Bắc Mỹ làm cho Spirulina ngày 
càng trở nên phổ biến 
Hình 2.6. Các sản phẩm có bổ sung tảo [26] 
Gần đây, trên thị trƣờng Việt Nam xuất hiện nhiều chế phẩm bán ở cửa 
hàng thực phẩm, siêu thị hoặc cả trong nhà thuốc với thành phần và công dụng 
rất gần với thực phẩm dinh dƣỡng và thuốc chữa bệnh. Những chế phẩm đó là 
sản phẩm giao thoa giữa thực phẩm và thuốc - còn gọi là thực dƣợc, dƣỡng dƣợc 
hay thực phẩm chức năng. 
Đặc biệt trong những tháng giữa năm 2005 tới nay, các chế phẩm chứa tảo 
Spirulina đang bán trong nhóm sản phẩm nêu trên đƣợc khá nhiều ngƣời chú ý. 
Thực phẩm dinh dƣỡng đƣợc dùng ở dạng nƣớc uống, siro, yaourt, bột dinh 
dƣỡng. Có thể dùng tảo nguyên chất để uống hoặc trộn vào thức ăn nhƣ nấu 
canh, làm bánh. Một số nƣớc còn có trà Spirulina. Ở Đức, ngƣời ta đã bắt đầu 
đƣa tảo vào bia, gọi là bia xanh. 1 ngƣời dùng 1 ngày 5g tảo là đủ các chất thiết 
yếu. Cơ thể có thể hấp thụ mỗi ngày 30 – 45g. Dùng thừa cũng vô hại. Ngƣời bị 
bệnh nặng không ăn đƣợc có thể bơm tảo thẳng vào dạ dày là đủ các chất dinh 
dƣỡng. 
21 
2.5.2. Ứng dụng trong xử lí môi trƣờng 
Ở Việt Nam hiện nay, quy mô và mức độ ô nhiễm kim loại nặng trong nƣớc 
thải công nghiệp đang gia tăng với tốc độ đáng lo ngại. Việc áp dụng các biện 
pháp hóa lý nhƣ đã nêu thƣờng có giá thành cao, khiến nhiều hoạt động công 
nghiệp vẫn tiếp tục thải nƣớc thải chứa kim loại nặng vào môi trƣờng. 
Các điều tra cho thấy các nhà máy ô tô, sản xuất pin và ắc qui, nhà máy 
thuộc da, các xí nghiệp mạ thải nƣớc thải chứa các kim loại nặng nguy hiểm nhƣ 
Ni, Cr, Fe, Hg, Cu, Pb. Vì vậy nghiên cứu sử dụng vi tảo để loại trừ kim loại 
nặng trong nƣớc thải công nghiệp ở nƣớc ta là một hƣớng công nghệ đáng đƣợc 
quan tâm. Tuy nhiên đây là một lĩnh vực còn rất mới mẻ ở Việt Nam. Đã có một 
vài công trình nghiên cứu liên quan đến lĩnh vực này đạt đƣợc một số kết quả 
trong việc sử dụng chất hấp thu sinh học để xử lý ô nhiễm Cr, Ni, và Pb trong 
nƣớc thải công nghiệp. 
Thử nghiệm cố định tế bào tảo Spirulina platensis trên các chất mang khác, 
xây dựng đƣợc phƣơng pháp cố định tế bào vi tảo trên các chất mang khác nhau 
nhƣ polyurethane, agar và carageenan. Tế bào tảo sau khi cố định vẫn có khả 
năng hoạt động sống bình thƣờng trong một thời gian dài. Sự hấp thu kim loại 
nặng phụ thuộc trạng thái của tảo khi đói dinh dƣỡng có khả năng hấp thu cao 
hơn. 
Nhƣ vậy triển vọng sử dụng sinh khối vi tảo sống hay chết, tự do hay cố 
định vào việc loại trừ kim loại nặng trong nƣớc thải là to lớn. 
22 
Trên cơ sở các thông tin đã nêu chúng ta có thể hình dung sơ đồ công nghệ 
xử lý ô nhiễm kim loại nặng trong nƣớc thải bằng cách sử dụng vi tảo nhƣ sau: 
Nƣớc thải sinh hoạt sau khi xử lý sinh học đƣợc tách bùn và dùng nhƣ là 
môi trƣờng để nuôi cấy tảo, sinh khối đƣợc tách ra và đem đi xử lý nhiệt hoặc 
đem đi cố định trong chất mang, sau đó sinh khối này đƣợc sử dụng nhƣ chất hấp 
phụ sinh học để thu nhận kim loại nặng. 
Nƣớc thải công nghiệp nặng có nồng độ kim loại cao và các chất độc sẽ 
đƣợc xử lý bằng các phƣơng pháp hóa lý trƣớc sau đó hoặc đƣợc trộn với nƣớc 
thải sinh hoạt đã xử lý và tiến hành nuôi cấy các chủng tảo đã chọn lọc trong hồ 
nuôi tảo hoặc cho tiếp xúc với chất hấp thụ sinh học làm từ sinh khối vi tảo trong 
bể hay cột hấp phụ. Sinh khối tảo sau khi thu hồi đƣợc xử lý theo chế độ xử lý 
bùn: phân giải yếm khí để tạo biogas hoặc làm khô rồi thiêu hủy nhiệt hoặc chôn 
lấp; còn nƣớc thải sau xử lý sẽ thải vào nguồn tiếp nhận nƣớc. 
Xử lý nhiệt 
Nƣớc thải sinh hoạt Xử lý sinh học Tách bùn 
Môi trƣờng nuôi cấy vi tảo 
Tách sinh khối 
Thải vào nguồn tiếp nhận nƣớc 
Hấp phụ sinh học 
Nuôi cấy tảo 
Xử lý bùn 
Thu hồi sinh khối tảo 
Phối trộn Xử lý hoá lý 
Nƣớc thải xử lý 
Nƣớc thải xử lý 
Nƣớc thải công nghiệp nặng 
(Kim loại và chất độc cao) 
Hấp phụ sinh học 
Cố định trong chất mang 
23 
Qua sơ đồ này chúng ta thấy việc sử dụng sinh khối vi tảo đã kết hợp xử lý 
cả nƣớc thải sinh hoạt và nƣớc thải công nghiệp chứa kim loại nặng. 
Sử dụng sinh khối vi tảo để loại bỏ kim loại nặng là một hƣớng công nghệ 
có nhiều tiềm năng. Tuy nhiên còn rất nhiều thách thức phải vƣợt qua để có thể 
hình thành và làm chủ đƣợc công nghệ này. Cần có nhiều sự quan tâm hơn nữa 
của các khoa học cũng nhƣ các nhà quản lý đối với lĩnh vực nghiên cứu đang còn 
mới mẻ này. 
2.5.3. Ứng dụng trong y học 
Các yếu tố cấu tạo nên tảo lam gồm 75% là chất hữu cơ và 25% là khoáng 
chất. Vì thế tảo chứa các chất căn bản trong việc trị liệu. 
Hình 2.7. Các sản phẩm từ tảo trong y học [42,43] 
Các đặc tính trị bệnh của tảo rất nhiều nhƣ tái bổ sung nƣớc, muối khoáng 
và dinh dƣỡng cho cơ thể. Thời gian ngâm mình trong nƣớc tảo thƣờng kéo dài 
khoảng 20 phút. Ngoài ra ngƣời ta thƣờng dùng tảo lam dƣới dạng cao dán nóng 
đắp lên toàn cơ thể hay trên những vùng đặc biệt trong 30 phút. 
Trong các trƣờng hợp khác, ngƣời ta xoa bóp thân thể với dƣợc liệu là tảo, 
có tác dụng làm dịu làn da hoặc dùng cả trong việc mát xa mặt. Chất chiết từ tảo 
lam đƣợc dùng làm chất tá dƣợc bao viên thuốc, thuốc sủi hoặc thuốc viên nang 
24 
và cả những loại thuốc không tan trong dạ dày, chỉ phóng thích hoạt chất ở ruột 
non. 
Ngoài ra tảo lam còn đƣợc nghiên cứu làm thuốc cầm máu và sát trùng. 
Sau sự kiện này hàng loạt tập đoàn dƣợc phẩm thế giới đã nhảy vào phát 
triển tảo thành thuốc. Hiện nay loài tảo này đã đƣợc trồng ở nhiều nƣớc nhƣ Mỹ, 
Nhật, Thái Lan, Trung Quốc, Ấn Độ, Pháp, Nigiêria, Nam Phi, Kênya. 
2.5.4. Ứng dụng trong mỹ phẩm 
Trong mỹ phẩm tảo lam làm phóng thích các hoạt chất tác động hiệu quả 
trong nƣớc tắm, trong kem xoa mặt và toàn thân nhờ hàm lƣợng magie và kali 
cao, là thành trì giúp cơ thể chống lại các khối u xơ ở cơ bắp. Chất chiết từ tảo 
còn đƣợc sử dụng trong một số sản phẩm nhƣ thuốc đắp, thuốc làm mặt nạ, kem 
hoặc để dùng tắm trong liệu pháp biển. 
Hình 2.8. Các sản phẩm từ tảo trong mỹ phẩm [39,40] 
2.6. Kỹ thuật sản xuất nƣớc giải khát 
2.6.1 Khái niệm về nƣớc giải khát: 
Nƣớc giải khát là nƣớc uống đóng chai hoặc đồ uống đƣợc pha chế từ nƣớc 
với các chất có nguồn gốc tự nhiên hoặc tổng hợp. 
25 
2.6.2 Quy trình sản xuất nƣớc giải khát: 
2.6.2.1 Nguyên liệu: 
Nƣớc: là nguyên liệu chính trong sản xuất nƣớc giải khát, vì vậy các tiêu 
chuẩn cho nƣớc đƣợc tuân thủ nghiêm ngặt. 
Đƣờng saccharose hoặc glucose : lựa chọn loại đƣờng khi đƣa vào cơ thể dễ 
hấp thu, mặt khác dễ hoà tan. 
Chất bảo quản: Muối benzoat, axit benzoit có tác dụng ức chế hoặc khử 
hoạt tính của enzym, làm ngừng các quá trình trao đổi chất trong tế bào vi sinh. 
Phá vỡ tế bào 
Saccharose Nƣớc Axit Citric 
Nấu syrup 
Làm nguội 
Lọc 
Chất bảo quản, 
hƣơng liệu 
chất còn lại 
Cặn 
Thu dịch lọc 
Phối trộn 
Xử lý hoàn 
thiện 
Thanh trùng 
Sản phẩm 
Bài khí 
Rót chai 
Phá vỡ tế bào 
Spirulina 
Ly tâm, lọc 
26 
Axit citric: dùng để điều chỉnh pH và tạo vị. Ngoài ra còn có tác dụng nhƣ 
một chất xúc tác cho quá trình nghịch đảo đƣờng tạo đƣờng khử, tăng độ ngọt và 
chống sự kết tinh. 
 2.6.2.2 Diễn giải quy trình công nghệ: 
- Hoà tan đƣờng: Đƣờng trƣớc khi đƣa vào nƣớc uống phải đƣợc hoà tan 
bằng hệ thống khuấy sục để tạo thành dung dịch syrup, nhiệt độ của dịch syrup từ 
50 – 600C nấu trong thời gian 20 – 30 phút nhằm tránh hiện tƣợng lại đƣờng. 
- Lọc syrup: Sử dụng lọc thô hoặc lọc tinh nhằm tách các tạp chất. 
- Phá vỡ tế bào Spirulina: Sinh khối Spirulina đƣợc phá vỡ bằng phƣơng 
pháp sốc nhiệt (PPVL) hoặc thẩm tích (PPKT) nhằm thu đƣợc lƣợng dịch chứa 
hàm lƣợng protein tối đa. 
- Phối trộn: Các thành phần sẽ đƣợc đƣa vào phối trộn và bổ sung chất phụ 
gia, sử dụng thiết bị phối trộn cơ học, nhiệt độ trong quá trình phối trộn 50 – 
60
0
C. 
- Thanh trùng: Dung dịch đƣợc đƣa vào thanh trùng ở nhiệt độ 500C trong 
thời gian 30 phút. 
- Bài khí: Hạn chế ảnh hƣởng xấu đến sản phẩm trong quá trình bảo quản, 
làm tăng hiệu quả truyền nhiệt. 
- Rót chai: Sản phẩm sẽ đƣợc đƣa vào máy rót chai, đóng nắp tự động. 
27 
2.6.3. Kỹ thuật sản xuất nƣớc khoáng Vĩnh Hảo 
Sơ đồ: Sản xuất nước khoáng Vĩnh Hảo. 
2.6.4. Kỹ thuật sản xuất nƣớc tinh khiết 
Nƣớc tinh khiết đƣợc khai thác từ nguồn nƣớc ngầm, đảm bảo độ tinh khiết 
nhờ đƣợc xử lý qua hệ thống thẩm thấu ngƣợc và ozon. Thanh trùng bằng tia cực 
tím. 
2.6.5. Kỹ thuật sản xuất rƣợu trái cây 
Hỗn hợp trái cây đƣợc cho phối trộn với đƣờng và ủ ở nhiệt độ bình thƣờng. 
Sau 10 – 15 ngày lên men tạo sản phẩm rƣợu. 
Bơm trực tiếp nƣớc từ nguồn 
Lọc tinh Chiết rút 
Chuyển vào nhà máy 
Lọc thô 
Chai 
Khử trùng 
Súc rửa 
Sấy 
Đóng chai 
Dán nhãn 
Thành phẩm 
Kiểm tra chất lƣợng 
28 
Chƣơng 3 
VẬT LIỆU VÀ PHƢƠNG PHÁP 
3.1. Thời gian và địa điểm thực hiện đề tài 
3.1.1. Thời gian: Từ 4/2007 – 8/2007. 
3.1.2. Địa điểm: Chi cục Đo lƣờng Tiêu chuẩn Chất lƣợng tỉnh Bình Thuận, 
đƣờng Nguyễn Hội, Tp.Phan Thiết 
3.2. Nguồn cung cấp nguyên liệu 
Nguồn sinh khối vi khuẩn lam Spirulina platensis đƣợc sản xuất bởi sản 
phẩm thƣơng mại của Công ty Vĩnh Hảo. 
3.3. Đối tƣợng nghiên cứu 
- Đối tƣợng nghiên cứu: Vi khuẩn lam Spirulina Platensis. 
- Đối tƣợng thử nghiệm: Nƣớc khoáng, nƣớc tinh khiết - Aquafina, rƣợu trái 
cây. 
3.4. Vật liệu 
3.4.1. Thiết bị 
- Máy cất đạm. 
- Ống chuẩn độ. 
- Lò nung. 
- Lò siêu âm. 
- Tủ hút. 
- Tủ sấy. 
- Nồi hấp khử trùng. 
- Máy đo OD. 
- Cân điện tử. 
- Máy lắc. 
29 
3.4.2. Hoá chất 
- Axit H2SO4 đậm đặc, axit ascorbic, axit nitric. 
- Muối Na2CO3, CuSO4. 
- Hỗn hợp thuốc thử methyl đỏ và xanh. 
- Hỗn hợp xúc tác CuSO4/K2SO4, nƣớc cất, NaOH, thuốc thử Folin. 
3.5. Các phƣơng pháp phân tích [1,2,3,4,5,6,7,8,9] 
3.5.1. Phƣơng pháp xác định protein bằng phƣơng pháp Kjeldahl 
3.5.1.1. Nguyên tắc 
Dƣới tác dụng của H2SO4 đặc ở nhiệt độ cao, các hợp chất chứa nitơ bị phân 
huỷ và bị oxi hoá đến CO2 và H2O, còn nitơ chuyển thành amoniac (NH3) và tiếp 
tục kết hợp với H2SO4 tạo thành muối amoni sulfat. 
Quá trình đƣợc thực hiện theo các bƣớc sau 
Bƣớc 1: Vô cơ hoá nguyên liệu 
t
o 
R – CH – COOH + H2SO4 CO2 + H2O + (NH4)2SO4 
Chất xúc tác 
NH2 
Bƣớc 2: Cất đạm 
Phản ứng xảy ra trong máy cất đạm 
(NH4)2SO4 + 2NaOH Na2SO4 + 2NH3 + 2H2O 
Phản ứng xảy ra trong bình hứng 
NH3 + H2SO4 (NH4)2SO4 + H2SO4dƣ 
Bƣớc 3: Chuẩn độ lƣợng H2SO4 còn thừa trong bình hứng bằng NaOH. 
30 
3.5.1.2. Quá trình thực hiện 
Hình 3.8. Máy cất đạm 
(A): Bình phát hơi nƣớc, (B): Hệ thống hút chất thử từ bình C sau khi 
đã cất xong thải ra ngoài, (C): Bình chứa chất thử đã vô cơ hóa (bình phản ứng), 
(D): Phễu cho chất thử đã vô cơ hóa và chất NaOH vào bình (C), (E): Ống sinh 
hàn, (F): Bình chuẩn độ, bình hứng NH3, (P2): Khóa dẫn nƣớc từ phễu D xuống 
bình C, (P1): Khóa dẫn nƣớc từ bình B thải ra ngoài. 
 Quá trình thực hiện theo các bƣớc: 
Bƣớc 1: Vô cơ hoá nguyên liệu quá trình đƣợc tiến hành trong tủ hút để 
tránh khí độc SO2, CO2. 
Nếu mẫu ở dạng bột khô: Cân chính xác 0,2g nguyên liệu, dùng một ống 
giấy cuộn tròn cho mẫu cẩn thận vào tận đáy bình Kjeldahl, thêm vào vài giọt 
nƣớc cất vô đạm. Tiếp tục cho 0,2g hỗn hợp xúc tác K2SO4/CuSO4 và 5 ml 
H2SO4 đặc. 
Tiếp tục cho 0,2g hỗn hợp xúc tác K2SO4/CuSO4 và 5 ml H2SO4 đặc. 
Để nghiêng bình Kjeldahl trên bếp đặt trong tủ hút và đun từ khoảng 2 – 3 
giờ. cho đến khi dung dịch trở nên trong suốt và có màu xanh da trời nhạt. Để 
31 
nguội. Chuyển dịch sang bình định mức 100 ml, tráng bình Kjeldahl nhiều lần 
bằng nƣớc cất vô đạm đến vạch định mức. 
Bƣớc 2: Cất đạm 
Rửa máy: Đun sôi bình A và mở nƣớc vào ống làm lạnh lúc khoá P1 và P2 
đều đóng, sau đó cho vào phễu trong một ít nƣớc cất (khoảng 10 ml) và cho chảy 
xuống bình C bằng kẹp P2. Hơi nƣớc của bình A, sẽ từ từ qua erlen F, cứ để nhƣ 
vậy cho đến khi ở F có khoảng 5 ml nƣớc. Lấy đèn khỏi bình A, hơi nƣớc trong 
máy sẽ nguội lại, làm giảm áp suất ở A và B, do đó nƣớc trong bình C sẽ rút qua 
B. Khi nƣớc rút hết, thêm nƣớc vào phễu D và mở kẹp P2 cho nƣớc chảy vào C, 
kế đó nƣớc sẽ rút qua B. Ta có thể làm nhƣ vậy vài lần. Nếu nƣớc ở bình B đầy, 
mở kẹp P1 cho nƣớc rút đi. Khoá kẹp P1 và P2 đẩy bếp vào dƣới bình A. 
Chuẩn bị dung dịch ở bình hứng NH3 (bình F): cho vào bình hứng F (erlen 
250 ml) 10 – 20 ml H2SO4 N/100 và ba giọt thuốc thử hỗn hợp thuốc thử methyl 
đỏ - methyl xanh, dung dịch có màu tím đỏ. Đặt bình hứng sao cho đầu mút của 
ống sinh hàn E ngập trong dung dịch H2SO4 N/100 của bình hứng. 
Quá trình lôi cuốn bằng hơi nƣớc: 
Lúc này bình A đang đƣợc đun sôi, kẹp P1 và P2 đóng. Đổ vào phễu D 10 
ml dung dịch đạm đã vô cơ hoá và pha loãng, mở kẹp P2 để dung dịch này chảy 
từ từ xuống C, đóng P2 lại. Đổ nƣớc tráng vào bình D và cũng mở kẹp P2 thật nhẹ 
nhàng để nƣớc chảy từ từ xuống C từng giọt cho đến khi mực nƣớc trong D 
xuống gần sát đến kẹp P2 thì khoá P2 lại. Sau đó tráng D với một ít nƣớc cất và 
cũng mở kẹp P2 thật nhẹ nhàng để nƣớc chảy từ từ xuống C từng giọt cho đến khi 
mực nƣớc trong D xuống gần sát tới kẹp P2 thì khoá P2 lại. Rửa một lần nữa với 
thao tác tƣơng tự nhƣ trên. 
Thêm vào phễu D 10 ml NaOH đậm đặc. Mở khoá P2 từ từ để cho NaOH 
chảy xuống C từng giọt một. Nếu nƣớc trong C chảy mạnh quá thì khoá P2 lại, 
rồi tiếp tục cho chảy từ từ cho đến khi NaOH chảy gần hết xuống C. 
Tráng phễu D hai lần với một ít nƣớc cất. Nên nhớ chỉ cho nƣớc chảy xuống gần 
sát tới kẹp P2 mà thôi. 
32 
Tiếp tục lôi cuốn trong 5 phút, hạ erlen F xuống sao cho đầu mút của ống 
sinh hàn nằm trong không khí, đun tiếp 3 phút. Rửa đầu nhọn của ống làm lạnh E 
bằng một tia nƣớc của bình sịt. Lấy erlen F ra để định phân lƣợng thừa H2SO4. 
Đem đèn ra khỏi bình A, rửa sạch C (rửa máy) vài lần nhƣ đã hƣớng dẫn ở phần 
trên. 
Thực hiện hai lần thử không 3 lần thử thật 
Bƣớc 3: Chuẩn độ 
Lƣợng H2SO4 N/100 còn thừa trong bình F đƣợc chuẩn độ bằng NaOH 
N/100. Quá trình chuẩn độ kết thúc khi dung dịch chuyển từ tím đỏ sang xanh lá 
mạ. 
Xác định hệ số hiệu chỉnh k: lấy hai erlen, cho vào mỗi erlen 20 ml H2SO4 
N/100 và vài giọt methyl đỏ - methyl xanh. Sau đó chuẩn độ bởi NaOH N/100 
lấy giá trị trung bình của hai lần chuẩn độ. Hệ số hiệu chỉnh K sẽ đƣợc tính theo 
công thức: 
20mlH2SO4 N/100 
K = (1) 
VNaOH N/100 
Tính kết quả 
Gọi Vo là trị số trung bình của 2 lần thử không 
Vt là trị số trung bình của 3 lần thử thật. 
Vậy ∆V = Vo – Vt là lƣợng NaOH tƣơng ứng với NH3 phóng thích bởi 10 
ml dung dịch đạm đã vô cơ hoá và pha loãng là: 
∆V x K 
 = ∆V x K x 10-5 (mol) (2) 
100 x 1000 
Số gram đạm có trong 10 ml dung dịch đạm đã vô cơ hoá và pha loãng là: 
14 x ∆V x K x 10-5 (g) 
33 
Số gram đạm có trong 100 ml dung dịch đạm vô cơ hoá là: 
14 x ∆V x K x 10-5 x 100 
 = 14 x ∆V x K x 10-4 (g) (3) 
 10 
Vậy: 
14 x ∆V x K x 10-4 x 100 
A = (4) 
m 
Trong đó: 
A: hàm lƣợng nitơ tổng số. 
m: lƣợng mẫu đem xác định protein 
Suy ra lƣợng protein (P) = A x 6,25 (5) 
3.5.2 Phƣơng pháp xác định protein bằng phƣơng pháp Lowry 
3.5.2.1. Nguyên tắc: 
Dựa vào cƣờng độ màu xanh của phức chất đồng protein khử hỗn hợp 
photphocolphramat để xác định protein. Phức chất màu xanh có độ hấp thu cực 
đại ở bƣớc sóng 750nm. 
Phƣơng pháp Lowry sử dụng phối hợp phản ứng Biure (tác dụng lên liên 
kết peptid) và phản ứng với thuốc thử folin để tạo phức màu đặc trƣng. Ngoài ra, 
cƣờng độ màu của phức chất có thể tăng lên trong môi trƣờng phản ứng có chứa 
muối amon, phenol, vòng imizadol pirimidin, axit uric, các ion kim loại hoặc 
cƣờng độ màu của phức chất có thể bị giảm khi có mặt etanol, aceton, TCA, axit 
pecloric. Vì vậy, để đạt cƣờng độ chính xác của dung dịch protein với thuốc thử 
folin đòi hỏi protein phải đƣợc tinh sạch. 
 Phƣơng pháp Lowry có độ nhạy tƣơng đối cao, cho phép xác định dung 
dịch mẫu chứa vài chục gam protein. Tuy nhiên phƣơng pháp này không dùng để 
định lƣợng các protein không chứa các axit amin vòng thơm nhƣ gelatin. 
34 
3.5.2.2. Thực hành 
Cho vào ống nghiệm 1ml dung dịch mẫu thí nghiệm, tính toán sao cho khối 
lƣợng protein có trong dung dịch khoảng 0,02 – 0,2 mg/ml (20 µg – 200 µg) 
protein. Thêm vào ống nghiệm 4 ml dung dịch C, lắc đều, để yên trong 10 phút ở 
nhiệt độ phòng. Sau đó thêm 0,5 ml thuốc thử folin, lắc đều, để yên từ 30 – 90 
phút, màu của phản ứng sẽ chuyển từ màu vàng sang màu xanh so màu trên máy 
quang phổ hoặc máy so màu ở bƣớc sóng 750 nm. Xác định trị s
            Các file đính kèm theo tài liệu này:
 THANH GIA NGOC HAN.pdf THANH GIA NGOC HAN.pdf