Chúng tôi đã nghiên cứu và đã xây dựng được quy trình sử dụng
Kit CATT gồm 6 bước sau: Chuyển Kit về nhiệt độ phòng trước khi sử
dụng; Sử dụng pipette, lấy 0,5 ml dung dịch pha loãng huyết thanh vào
ống eppendorf; Lấy 0,1 ml huyết thanh cần chẩn đoán trộn đều vào
ống eppendorf có chứa dung dịch pha loãng huyết thanh, pha loãng
theo tỷ lệ 1/32; Nhỏ lên các vòng tròn trên card phản ứng, mỗi vòng
tròn 20 µl dung dịch kháng nguyên gắn lên hạt latex; Nhỏ các mẫu
huyết thanh cần chẩn đoán, huyết thanh dương tính chuẩn, huyết thanh
âm tính chuẩn lần lượt vào các vòng tròn đã chứa kháng nguyên. Mỗi
vòng tròn nhỏ 20 µl dung dịch huyết thanh (huyết thanh cần chẩn
đoán, hoặc huyết thanh dương tính chuẩn, hoặc huyết thanh âm tính
chuẩn); Dùng que trộn, trộn đều các giọt kháng nguyên và huyết thanh.
Giữ card phản ứng ở nhiệt độ phòng trong 10 phút rồi đọc kết quả dựa
trên sự hình thành các đám ngưng kết.
27 trang |
Chia sẻ: honganh20 | Ngày: 15/03/2022 | Lượt xem: 323 | Lượt tải: 0
Bạn đang xem trước 20 trang tài liệu Tóm tắt Luận án Nghiên cứu xác định tỷ lệ nhiễm và chế tạo kit chẩn đoán bệnh tiên mao trùng (trypanosomiasis) ở đàn trâu tại tỉnh Tuyên Quang, để xem tài liệu hoàn chỉnh bạn click vào nút DOWNLOAD ở trên
át hiện
được. Chính vì vậy, việc chẩn đoán qua triệu chứng lâm sàng ở trâu,
bò có độ chính xác không cao. Do đó, ngoài chẩn đoán qua các triệu
chứng lâm sàng, cần phải tiến hành các phương pháp chẩn đoán
phòng thí nghiệm để có kết quả chẩn đoán chính xác.
Theo Tổ chức Thú y thế giới OIE (2012), chưa có vắc xin đặc
hiệu để phòng bệnh tiên mao trùng cho gia súc. Tuy nhiên, vẫn có thể
phòng bệnh tiên mao trùng bằng các biện pháp phòng bệnh tổng hợp.
Nhiều loại hóa dược đã được sử dụng để điều trị bệnh tiên mao
trùng cho gia súc. Naganin, novarsenobenzol, trypamidium, berenil
(azidin)... là những loại hóa dược đã được sử dụng trong nhiều năm ở
nước ta nhưng cho kết quả không ổn định. Vì vậy, muốn nâng cao biện
pháp điều trị bệnh tiên mao trùng thì cần điều trị bệnh bằng biện pháp
tổng hợp, vừa chú ý chăm sóc con vật ốm, vừa dùng một trong những
thuốc đặc hiệu mới thu được kết quả tốt (Nguyễn Thị Kim Lan, 2012).
4
CHƢƠNG 2
VẬT LIỆU, NỘI DUNG VÀ PHƢƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU
2.1. Đối tƣợng, thời gian, địa điểm nghiên cứu
2.1.1. Đối tượng nghiên cứu
- Bệnh tiên mao trùng do đơn bào T. evansi gây ra trên trâu ở 4
huyện của tỉnh Tuyên Quang: huyện Sơn Dương, Yên Sơn, Hàm Yên
và Chiêm Hóa.
- Kháng nguyên RoTAT 1.2 của T. evansi.
- Kit CATT chẩn đoán bệnh tiên mao trùng.
2.1.2. Địa điểm nghiên cứu
2.1.2.1. Địa điểm triển khai: tại tỉnh Thái Nguyên và Bắc Giang
2.1.2.2. Địa điểm xét nghiệm mẫu
- Đề tài được thực hiện tại các nông hộ ở 4 huyện của tỉnh Tuyên
Quang: huyện Sơn Dương, Yên Sơn, Hàm Yên và Chiêm Hóa.
- Địa điểm xét nghiệm mẫu:
+ Phòng thí nghiệm Khoa Chăn nuôi thú y, Trường Đại học Nông Lâm
Thái Nguyên.
+ Trung tâm Chẩn đoán thú y Trung ương.
+ Khoa Công nghệ sinh học - Viện đại học mở Hà Nội.
2.1.3. Thời gian nghiên cứu: Từ năm 2013 - 2017
2.2. Vật liệu nghiên cứu
* Các loại mẫu nghiên cứu: Mẫu máu trâu thu thập tại 4 huyện
thuộc tỉnh Tuyên Quang; Đơn bào T. evansi: phân lập từ máu trâu
mắc bệnh tiên mao trùng tại tỉnh Tuyên Quang.
* Thiết bị và dụng cụ: Tủ ấm ổn nhiệt; Lò vi sóng: Sanyo
(Nhật). Máy PCR (Gen Amp PCR system 9700); Máy phân tích trình
5
tự ADN ABI 3100 - Avant: Applied BioSiences (Mỹ). Máy PCR
(Thermo cycle): Bio - Rad (Pháp). Máy ly tâm lạnh (Biofuge Primo
R): Heraeus (Mỹ). Máy đo pH (Digital pH Meter Delta 320):
Thommas Scientific (Mỹ). Máy chụp ảnh Gel - Doc: Dolphin (Mỹ),
Tủ lạnh - 20oC, - 80oC; Tủ an toàn sinh học cấp II: Nuaire (Mỹ), xi
lanh, kim tiêm, lam kính và lamen...
* Hóa chất: Các loại hóa chất do hãng Fementas, Sigma,
BioLabs và Applied BioSiences (Mỹ) sản xuất bao gồm: acrylamide,
Bis-acrylamide, Tris-HCl, Tris base, Tricine, glycerol, sucrose,
ethylene glycol, benzamidine, xanh methylene, X - gal, agarose,
peptone, yeast extract, EDTA, PMSF, SDS, APS, TEMED, Tween
20, TMB, IPTG, NaHPO4, NaCl, NaH2PO4, K2HPO4, KH2PO4,
NaOH, MgSO4, MgCl2, CaCl2,...
* Thuốc điều trị tiên mao trùng: azidin, trypamidium samorin,
trypanosoma, cafein natri benzoat 20%, nước sinh lý mặn, vitamin
C 5%, vitamin B1 2,5%.
2.3. Nội dung nghiên cứu
2.3.1. Nghiên cứu xác định tỷ lệ nhiễm tiên mao trùng trên đàn
trâu ở tỉnh Tuyên Quang và áp dụng phác đồ điều trị
- Tỷ lệ nhiễm tiên mao trùng ở trâu tại tỉnh Tuyên Quang.
- Tỷ lệ nhiễm tiên mao trùng ở trâu theo lứa tuổi.
- Tỷ lệ nhiễm tiên mao trùng ở trâu theo tính biệt.
- Tỷ lệ nhiễm tiên mao trùng ở trâu theo mùa vụ.
- Xác định loài tiên mao trùng gây bệnh trên đàn trâu ở tỉnh
Tuyên Quang.
- Áp dụng phác đồ hiệu quả điều trị bệnh tiên mao trùng cho
trâu ở tỉnh Tuyên Quang.
6
2.3.2. Nghiên cứu chế tạo và thử nghiệm Kit CATT trong chẩn
đoán bệnh tiên mao trùng cho đàn trâu của tỉnh Tuyên Quang
2.3.2.1. Nghiên cứu các điều kiện tách dòng và xác định trình tự gen mã hóa
kháng nguyên bề mặt RoTAT 1.2 của loài tiên mao trùng T. evansi
- Tách ADN tổng số từ tiên mao trùng T. evansi.
- Khuếch đại gen RoTAT 1.2 bằng kỹ thuật PCR
- Tách dòng và xác định trình tự gen mã hóa kháng nguyên bề
mặt của T. evansi.
2.3.2.2. Nghiên cứu biểu hiện gen mã hóa kháng nguyên bề mặt của
T. evansi
- Tạo dòng vector biểu hiện pET22b (+) mang gen đích RoTAT 1.2.
- Chọn dòng mang cấu trúc biểu hiện pET22 - RoTAT 1.2 tái tổ hợp.
- Biểu hiện protein RoTAT 1.2 tái tổ hợp.
- Xác định các điều kiện biểu hiện gen mã hóa kháng nguyên
RoTAT 1.2 trong vi khuẩn E. coli.
2.3.2.3. Nghiên cứu chế tạo và thử nghiệm Kit CATT trong chẩn
đoán bệnh tiên mao trùng
- Nghiên cứu xác định các điều kiện gắn kháng nguyên lên hạt latex.
- Đánh giá ảnh hưởng của chất nhuộm màu kháng nguyên
đến mức độ ngưng kết.
- Xác định các điều kiện bảo quản kháng nguyên tái tổ hợp.
- Xây dựng quy trình sử dụng Kit CATT chế tạo.
- Xác định độ nhạy, độ đặc hiệu của Kit CATT chế tạo để chẩn
đoán bệnh tiên mao trùng.
- Xác định các điều kiện bảo quản Kit CATT.
- Thử nghiệm Kit CATT chế tạo từ kháng nguyên tái tổ hợp
RoTAT 1.2 để chẩn đoán bệnh tiên mao trùng.
7
2.4. Phƣơng pháp nghiên cứu
2.4.1. Phương pháp xác định tỷ lệ nhiễm tiên mao trùng trên đàn
trâu của tỉnh Tuyên Quang và áp dụng phác đồ điều trị
- Thu thập mẫu máu trâu ở 4 huyện của tỉnh Tuyên Quang theo
phương pháp lấy mẫu chùm nhiều bậc. Mẫu được thu thập ngẫu
nhiên ở các hộ nuôi trâu.
- Xét nghiệm mẫu bằng các phương pháp sau: xem tươi, tiêm
truyền chuột nhắt trắng.
- Định danh tiên mao trùng bằng kỹ thuật sinh học phân tử, giải
trình tự gen 18S của tiên mao trùng, đối chiếu hình ảnh bản BLAST
với Ngân hàng gen thế giới (genBank) để có kết quả về mức độ
tương đồng gen, từ đó xác định được đó là loài tiên mao trùng nào.
- Áp dụng 3 phác đồ điều trị trên diện hẹp, mỗi phác đồ điều trị
cho 3 trâu. Sau đó, áp dụng 3 phác đồ này trên diện rộng cho trâu
nhiễm tiên mao trùng của tỉnh Tuyên Quang để đánh giá hiệu quả.
2.4.2. Phương pháp nghiên cứu chế tạo và thử nghiệm Kit CATT trong
chẩn đoán bệnh tiên mao trùng cho đàn trâu của tỉnh Tuyên Quang
2.4.2.1. Phương pháp nghiên cứu tách dòng gen mã hóa kháng
nguyên bề mặt của tiên mao trùng T. evansi
Từ mẫu máu chuột có chứa T. evansi được phân lập từ trâu bị
mắc bệnh tiên mao trùng tại tỉnh Tuyên Quang, chúng tôi đã tiến
hành tách ADN tổng số. Kết quả tách ADN tổng số được kiểm tra và
đánh giá bằng phương pháp điện di trên gel agarose 1%.
Gen mã hóa kháng nguyên RoTAT 1.2 của tiên mao trùng
được khuếch đại bởi cặp mồi gồm mồi xuôi RoTAT 1.2F: 5’-ATA
GAA TTC AGG GGT GTT TAA AGC AA-3’ và mồi ngược RoTAT
1.2R: 5’-AAT GTC GAC TAG TGC GTG TGT TCG-3’. Phản ứng
PCR thực hiện với 35 chu kỳ theo các chu trình nhiệt: 95ºC/5 phút,
95ºC/30 giây, 57ºC/30 giây, 72ºC/30 giây. Sau đó phản ứng tiếp tục ở
8
72ºC/5 phút. Sản phẩm PCR được gắn vào vector biểu hiện vector
pET22b (+) tại 2 vị trí của enzyme giới hạn EcoRI và SalI để tạo
vector tái tổ hợp pET22/RoTAT 1.2.
2.4.2.2. Phương pháp nghiên cứu biểu hiện gen mã hóa kháng
nguyên bề mặt của tiên mao trùng T. evansi
Hai dòng E. coli BL21 (DE3) mang vector tái tổ hợp pET22 -
RoTAT 1.2 được nuôi cấy lắc trong môi trường LB lỏng có chứa
kháng sinh ampicillin nồng độ 100 µg/ml, ở 37°C trong 12 giờ. Từ
dịch nuôi cấy, chúng tôi tiếp tục cấy chuyển sang môi trường LB
lỏng có bổ sung ampicillin 100 µg/ml, nuôi cấy lắc trong 4 giờ. Sau 4
giờ bổ sung chất cảm ứng IPTG để đạt đến nồng độ cuối cùng là 1
mM. Tiến hành nuôi cấy với tốc độ 115 vòng/phút trong 4 giờ, thu
sinh khối, xử lý. Kết quả được kiểm tra bằng phương pháp điện di
trên gel polyacrylamide có SDS, Tricine và phương pháp lai Western
blot với kháng thể đặc hiệu kháng RoTAT 1.2.
Với mục đích thu được lượng lớn protein tái tổ hợp RoTAT 1.2,
chủng E. coli chứa plasmid tái tổ hợp được nuôi cấy trong các điều
kiện (pH môi trường, nồng độ kháng sinh, thời gian và nhiệt độ nuôi
cấy, nồng độ IPTG và thời gian, nhiệt độ cảm ứng) khác nhau để lựa
chọn được điều kiện nuôi cấy thích hợp nhất. Sau đó, mẫu được chạy
điện di trên gel polyacrylamide để kiểm tra kết quả. Mỗi giếng chạy
10 l mẫu để so sánh sự biểu hiện của gen mã hóa kháng nguyên
RoTAT 1.2 trong các điều kiện khác nhau.
2.4.2.3. Phương pháp nghiên cứu chế tạo Kit chẩn đoán bệnh từ
kháng nguyên tái tổ hợp RoTAT 1.2
* Phương pháp tạo phức hợp kháng nguyên - hạt latex để phát
bệnh tiên mao trùng
Kháng nguyên và hạt latex có bản chất rất khác nhau. Chính vì
vậy, để chế tạo được Kit, tiến hành kết hợp thử nghiệm kháng nguyên
9
và hạt latex với các nồng độ và tỷ lệ khác nhau, ở điều kiện khác nhau.
Từ đó, đánh giá và xác định được lượng kháng nguyên - hạt latex và
điều kiện phản ứng phù hợp để tạo được phức hợp bền vững nhất.
* Phương pháp xác định độ nhạy và độ đặc hiệu của Kit CATT
Gây nhiễm tiên mao trùng T. evansi cho trâu. Kiểm tra bằng
phương pháp tiêm truyền chuột để khẳng định trâu nhiễm (+) và
không nhiễm (-) tiên mao trùng. Lấy mẫu huyết thanh trâu (+) và (-)
để sử dụng Kit, xác định độ nhạy và độ đặc hiệu của Kit.
* Phương pháp nghiên cứu điều kiện bảo quản Kit
Tiến hành bổ sung lần lượt các chất ức chế phân giải protein, chất
ổn định protein và chất diệt khuẩn và bảo quản Kit ở các điều kiện
nhiệt độ khác nhau. Sau đó, xác định độ nhạy và độ đặc hiệu của
phản ứng khi sử dụng Kit tại các thời điểm khác nhau. Từ đó, xác
định điều kiện phù hợp để bảo quản Kit.
2.4.2.4. Phương pháp thử nghiệm Kit CATT chế tạo từ kháng nguyên
tái tổ hợp RoTAT 1.2 để chẩn đoán bệnh tiên mao trùng
Thử nghiệm Kit CATT để chẩn đoán bệnh tiên mao trùng trên
550 trâu ở các địa phương, sau đó so sánh hiệu quả chẩn đoán của Kit
CATT, kỹ thuật ELISA với phương pháp tiêm truyền chuột. Bằng
phương pháp tiêm truyền chuột, chúng tôi đã xác định được chính
xác trong 550 trâu này có 66 con dương tính, 484 con âm tính với T.
evansi. Từ đó, xác định được độ nhạy, độ đặc hiệu, giá trị dự báo âm
tính và giá trị dự báo dương tính; so sánh hiệu quả chẩn đoán của các
phương pháp trên với phương pháp tiêm truyền chuột.
2.5. Phƣơng pháp xử lý số liệu
Số liệu được xử lý bằng phương pháp thống kê sinh vật học theo
tài liệu của Nguyễn Văn Thiện (2008), trên phần mềm Microsoft
Excel 2007 và phần mềm Minitab 14.0, các phần mềm tin - sinh học
gồm các chương trình ChromasLite, SeqEd1.3, MacVector8.2,
GeneDoc2.7 và MEGA6.06.
10
CHƢƠNG 3
KẾT QUẢ NGHIÊN CỨU VÀ THẢO LUẬN
3.1. Tình hình nhiễm tiên mao trùng trên đàn trâu ở 4 huyện
thuộc tỉnh Tuyên Quang và áp dụng phác đồ điều trị hiệu quả
3.1.1. Tỷ lệ nhiễm tiên mao trùng ở trâu tại 4 huyện thuộc tỉnh
Tuyên Quang
Bằng phương pháp tiêm truyền chuột nhắt trắng, chúng tôi đã xác
định được tỷ lệ nhiễm tiên mao trùng ở trâu tại Tuyên Quang.
Kết quả được trình bày ở bảng 3.1.
Bảng 3.1. Tỷ lệ nhiễm tiên mao trùng ở trâu tại 4 huyện
thuộc tỉnh Tuyên Quang
Địa
phƣơng
(Huyện)
Số trâu
kiểm tra
(con)
Số trâu
nhiễm
(con)
Tỷ lệ
nhiễm
(%)
So sánh tỷ lệ nhiễm
giữa các huyện
Yên Sơn 257 28 10,89
χ2Yên Sơn, Hàm Yên = 0,684
P = 0,408
χ2 Hàm Yên, Chiêm Hóa = 0,931
P = 0,334
χ2 Chiêm Hóa, Sơn Dương = 1,674
P = 0,196
χ2 Yên Sơn, Sơn Dương = 0,019
P = 0,889
χ2 Hàm Yên, Sơn Dương = 0,286
P = 0,593
χ2 Yên Sơn, Chiêm Hóa = 3,137
P = 0,077
Hàm Yên 264 35 13,26
Chiêm Hóa 252 41 16,27
Sơn Dương 132 15 11,36
Tính
chung
905 119 13,15
χ2tính chung = 3,664
P = 0,300
11
Kết quả ở bảng 3.1 cho thấy:
Trong tổng số 905 trâu kiểm tra tại 4 huyện thuộc tỉnh Tuyên
Quang có 13,15% số trâu nhiễm tiên mao trùng. Mặc dù tỷ lệ này
không cao, song do tính chất nguy hiểm của bệnh tiên mao trùng nên
tỷ lệ nhiễm này rất có ý nghĩa trong dịch tễ học của bệnh.
3.1.2. Tỷ lệ nhiễm tiên mao trùng theo lứa tuổi trâu tại tỉnh
Tuyên Quang
Kết quả về tỷ lệ nhiễm tiên mao trùng theo tuổi của trâu trình bày
đồ thị hình 3.2.
Tỷ lệ nhiễm (%)
6,40
26,36
14,29
10,34
0
5
10
15
20
25
30
≤ 2 > 2 - 5 > 5 - 8 > 8 (Tuổi)
Hình 3.2. Đồ thị biến động nhiễm tiên mao trùng ở trâu
theo lứa tuổi
Hình 3.2 cho thấy: Tỷ lệ nhiễm ở trâu tăng dần theo tuổi. Trâu
dưới 2 năm tuổi nhiễm với tỷ lệ thấp nhất (6,40%), tiếp đến là trâu 2 -
5 năm tuổi (10,34%), trâu 5 - 8 năm tuổi nhiễm với tỷ lệ cao hơn
(14,29%), đặc biệt là những trâu trên 8 tuổi tỷ lệ nhiễm rất cao
(26,36%). Theo kết quả xử lý thống kê, tỷ lệ nhiễm giữa các lứa tuổi
của trâu sai khác rất rõ rệt.
12
3.1.3. Tỷ lệ nhiễm tiên mao trùng ở trâu theo tính biệt
Kết quả về tỷ lệ nhiễm tiên mao trùng ở trâu theo tính biệt được
trình bày ở bảng 3.3.
Bảng 3.3. Tỷ lệ nhiễm tiên mao trùng ở trâu theo tính biệt
Tính biệt
Số trâu
kiểm tra
(con)
Số trâu
nhiễm
(con)
Tỷ lệ
nhiễm
(%)
So sánh tỷ lệ
nhiễm giữa trâu
đực và trâu cái
Đực 536 69 12,87 χ
2
đực, cái = 0,088
P = 0,767 Cái 369 50 13,55
Tính chung 905 119 13,15
Qua kết quả bảng 3.3 cho thấy: Kiểm tra 536 trâu đực có 69 trâu
nhiễm tiên mao trùng; trong 369 trâu cái được kiểm tra có 50 trâu bị
nhiễm tiên mao trùng. Tỷ lệ nhiễm tiên mao trùng ở trâu đực là
12,87%, tỷ lệ nhiễm ở trâu cái là 13,55%. Theo đó, tỷ lệ nhiễm tiên
mao trùng ở trâu cái cao hơn so với trâu đực. Tuy nhiên, qua xử lý
thống kê cho thấy sự sai khác này không rõ rệt (P > 0,05).
3.1.4. Tỷ lệ nhiễm tiên mao trùng ở trâu theo mùa vụ
Kết quả về tỷ lệ nhiễm theo mùa được trình bày ở biểu đồ hình 3.4.
8,21
12,39
14,46
17,21
0
2
4
6
8
10
12
14
16
18
Xuân Hè Thu Đông
Tỷ lệ nhiễm (%)
Hình 3.4. Biểu đồ tỷ lệ nhiễm tiên mao trùng ở trâu theo mùa
trong năm
13
Biểu đồ hình 3.4 cho thấy, trâu bị nhiễm tiên mao trùng ở cả 4
mùa điều tra và có sự khác nhau giữa các mùa. Mùa xuân, trâu có tỷ
lệ nhiễm thấp nhất (8,21%). Tỷ lệ nhiễm tiên mao trùng tăng dần từ
mùa xuân đến hè, thu và cao nhất vào mùa đông (17,21%).
3.1.5. Kết quả xác định loài tiên mao trùng gây bệnh trên đàn trâu
của tỉnh Tuyên Quang
Sau khi phân lập được các chủng tiên mao trùng ký sinh ở trâu nuôi
tại 13 xã thuộc 4 huyện của tỉnh Tuyên Quang, bằng kỹ thuật sinh học
phân tử, chúng tôi đã định danh được loài tiên mao trùng gây bệnh.
Trên cơ sở các dữ liệu đã thu nhận được, chúng tôi đã xây dựng cây
phả hệ dựa trên trình tự nucleotide chuỗi gen 18S của 19 mẫu (bao gồm cả
bốn mẫu trong nghiên cứu). Kết quả xây dựng mối quan hệ phả hệ được
trình bày ở hình 3.8.
T.evansi-DH4-India(KY114580)
T.evansi-India(KT023565)
T.evansi-Sam-Thailand(AY912269)
T.evansi-Cairo-Egypt-Egypt(AB551919)
T.evansi-Cairo-Egypt(AB551921)
T.evansi-PH1-India(KY114576)
T.evansi-PK6-India(KY114578)
T.evansi-Cairo-Egypt(AB551920)
T.evansi-CB2-India(KY114579)
T.evansi-Cairo-Egypt(AB551922)
T.evansi-KAI-Thailand(AY912268)
T.evansi-B18-Thailand(AY904050)
T.evansi-CK5-India(KY114577)
T.evansi-Tansui-Taiwan(D89527)
T.evansi-Batongtani-Thailand(U75507)
TEV-HY-VN
TEV-SD-VN
TEV-CH-VN
TEV-YS-VN66
78
99
96
6766
0.001
Hình 3.8. Cây phả hệ dựa trên trình tự nucleotide gen 18S của
Tev-CH-VN; Tev-HY-VN; Tev-SD-VN và Tev-YS-VN với các
mẫu Trypanosoma evansi đã đƣợc đăng ký trong Ngân hàng gen
Ghi chú: Ký hiệu (♦) là các mẫu trong nghiên cứu này
14
Hình 3.8 cho thấy: Các mẫu Tev-CH-VN; Tev-HY-VN; Tev-
SD-VN và Tev-YS-VN đã được định danh chính xác là tiên mao
trùng Trypanosoma evansi.
3.1.6. Áp dụng phác đồ điều trị bệnh tiên mao trùng cho đàn
trâu của tỉnh Tuyên Quang
3.1.6.1. Áp dụng phác đồ điều trị bệnh tiên mao trùng trên diện hẹp
Để có cơ sở cho việc chọn lựa phác đồ điều trị bệnh tiên mao
trùng đạt hiệu quả cao và an toàn, chúng tôi tiến hành điều trị trên
diện hẹp cho 9 trâu thí nghiệm. Kết quả được tổng hợp và trình bày
tại bảng 3.6.
Bảng 3.6. Kết quả áp dụng phác đồ điều trị bệnh tiên mao trùng
trên diện hẹp
Phác
đồ
Số
TT
trâu
Kết quả (-)/(+)
Sau 1 - 3
ngày dùng
thuốc
Sau 4 - 15
ngày dùng
thuốc
Sau 16 - 25
ngày dùng
thuốc
Sau 26 - 35
ngày dùng
thuốc
I
1 + - - -
2 - - - -
3 + - - -
II
1 - - - -
2 - - - -
3 - - - -
III
1 - - - -
2 + - - -
3 - - - -
Kết quả bảng 3.6 cho thấy: Cả 3 phác đồ đều có hiệu lực diệt tiên
mao trùng, trong đó, phác đồ II có tác dụng trị tiên mao trùng nhanh
và triệt để nhất. Từ sau ngày thứ 4 đến ngày thứ 35 sau điều trị, kiểm
tra thấy cả 9 trâu đều sạch tiên mao trùng, không thấy trâu nào có
phản ứng cục bộ hoặc toàn thân.
15
3.1.6.2. Áp dụng phác đồ điều trị bệnh tiên mao trùng trên diện rộng
Từ kết quả áp dụng trên diện hẹp, chúng tôi tiến hành áp dụng 3
phác đồ trên diện rộng cho số trâu bị nhiễm tiên mao trùng ở 4 huyện
của tỉnh Tuyên Quang. Kết quả được trình bày ở bảng 3.7.
Bảng 3.7. Thử nghiệm phác đồ điều trị bệnh tiên mao trùng trên
diện rộng
Phác đồ
Số trâu điều
trị (con)
Số trâu (-) sau điều
trị (con)*
Tỷ lệ
(%)
I 38 36 94,74
II 42 42 100
III 39 38 97,44
Tính chung 119 116 97,48
Ghi chú: * Kiểm tra không còn tiên mao trùng trong vòng 30 ngày
sau điều trị
Kết quả bảng 3.7 cho thấy: Thuốc azidin điều trị cho 38 trâu bị
nhiễm tiên mao trùng. Sau 30 ngày dùng thuốc, kiểm tra mẫu máu
thấy 36/38 trâu không còn tiên mao trùng, hiệu lực đạt 94,74%.
Thuốc trypanosoma điều trị 39 trâu bị nhiễm tiên mao trùng có 38/39
trâu sạch tiên mao trùng, hiệu lực điều trị đạt 97,44%. Thuốc
trypamidium samorin điều trị cho 42 trâu bị nhiễm tiên mao trùng,
hiệu lực điều trị đạt 100%.
3.2. Nghiên cứu chế tạo và thử nghiệm Kit CATT trong chẩn
đoán bệnh tiên mao trùng cho đàn trâu của tỉnh Tuyên Quang
3.2.1. Kết quả tách dòng và xác định trình tự gen mã hóa kháng
nguyên bề mặt RoTAT 1.2 của T. evansi
3.2.1.1. Kết quả tách ADN tổng số của T. evansi
Từ mẫu máu chuột có chứa T. evansi được phân lập từ trâu bị
mắc bệnh tiên mao trùng tại tỉnh Tuyên Quang, chúng tôi đã tiến
hành tách ADN tổng số. Kết quả tách ADN tổng số được kiểm tra và
đánh giá bằng phương pháp điện di trên gel agarose 1% và được ghi
lại ở hình 3.9.
16
Hình 3.9 cho thấy, hình ảnh điện di trên gel agarose 1% của
ADN tổng số được tách chiết đảm bảo đủ điều kiện để thực hiện các
thí nghiệm tiếp theo trong nghiên cứu.
3.2.1.2. Kết quả khuếch đại gen RoTAT 1.2 bằng kỹ thuật PCR
Chúng tôi tiến hành khuếch đại gen mã hóa kháng nguyên
RoTAT 1.2 phục vụ cho việc tách dòng và biểu hiện gen này trong tế
bào vi khuẩn E. coli.
Kết quả điện di đồ ở hình 3.10 cho thấy, sản phẩm PCR của mẫu
ADN tổng số tách được từ tiên mao trùng đã phân lập có kích thước
khoảng 205 bp. Kích thước này là phù hợp với kích thước lý thuyết
của đoạn gen RoTAT 1.2.
Hình 3.9. Kết quả điện di ADN tổng số
Ghi chú: (Giếng 1: ADN tổng số tách được;
Giếng 2: Marker)
Hình 3.10. Kết quả điện di sản phẩm
PCR của mẫu ADN tổng số
Ghi chú: (Giếng 1: marker; Giếng 2, 3: sản
phẩm PCR của mẫu ADN tổng số)
17
3.2.1.3. Tách dòng và xác định trình tự gen mã hóa kháng nguyên bề mặt
của T. evansi
Tách dòng gen mã hóa kháng nguyên RoTAT 1.2 được thực hiện
bằng cách gắn trực tiếp sản phẩm PCR đã được xử lý cắt đầu bằng vào
vector tách dòng pJET1.2/blunt của hãng Fermentas.
- Giải trình tự đoạn gen RoTAT 1.2 đã tạo dòng
Plasmid pJET1.2 - RoTAT 1.2-1 được gửi đi xác định trình tự
đoạn gen đích tại công ty Macrogen (Hàn Quốc). Trình tự đoạn gen
trên được so sánh với các trình tự đã được công bố trên Ngân hàng
gen Quốc tế bằng phần mềm BLAST. Kết quả so sánh cho thấy, trình
tự xác định được có độ tương đồng 100% so với các trình tự gen mã
hóa kháng nguyên bề mặt T. evansi đã được công bố trên Ngân hàng
gen Quốc tế. Kết quả này khẳng định rằng đoạn gen được gắn vào
vector tách dòng pJET1.2/blunt chính là đoạn gen đích RoTAT 1.2.
Điều này chứng tỏ chúng tôi đã tách dòng thành công gen RoTAT
1.2 mã hóa kháng nguyên bề mặt của tiên mao trùng T. evansi.
3.2.2. Kết quả biểu hiện gen mã hóa kháng nguyên bề mặt của
T. evansi
Vector được lựa chọn để biểu hiện gen mã hóa kháng nguyên bề
mặt của tiên mao trùng T. evansi là vector pET22b (+) của hãng
Novagen, có chiều dài 5.493 bp. Sản phẩm cắt enzyme của gen
RoTAT 1.2 và vector pET22b (+) xuất hiện một băng duy nhất, có
kích thước 205 bp và 5,5 kb, tương tự như kích thước lý thuyết của
gen RoTAT 1.2 và vector pET22b (+). Kết quả này chứng tỏ, sản
phẩm PCR sau khi cắt bằng hai enzyme giới hạn EcoRI và SalI có
chất lượng tốt và cho phép chúng tôi tiến hành việc nối đoạn gen
RoTAT 1.2 vào vector biểu hiện pET22b (+).
18
Sự biểu hiện protein của gen RoTAT 1.2 được khẳng định bằng
phương pháp lai Western blot với kháng thể đặc hiệu kháng RoTAT
1.2. Kết quả lai Western blot được thể hiện ở hình 3.24.
Kết quả phản ứng western blot ở hình 3.24 cho thấy: Protein này
được nhận biết đặc hiệu bởi kháng thể kháng T. evansi, vạch phản
ứng của protein RoTAT 1.2 với kháng thể đặc hiệu với T. evansi
tương đương với vạch phản ứng của kháng nguyên hòa tan của T.
evansi với kháng thể đặc hiệu. Kết quả này cho phép kết luận rằng,
kháng nguyên RoTAT 1.2 đã được chế tạo thành công bằng công
nghệ tái tổ hợp gen.
* Nghiên cứu xác định các điều kiện biểu hiện gen mã hóa kháng
nguyên RoTAT 1.2 trong vi khuẩn E. coli
Từ các kết quả thử nghiệm các điều kiện biểu hiện gen mã hóa
kháng nguyên RoTAT 1.2 trong vi khuẩn E. coli, chúng tôi rút ra kết
luận: Điều kiện biểu hiện gen mã hóa kháng nguyên RoTAT 1.2
trong vi khuẩn E. coli là ở 37°C trong thời gian 4 giờ, pH môi trường
là 7, vi khuẩn có mật độ OD600 = 0,8; nồng độ kháng sinh ampicillin
là 100 g/ml. Điều kiện cảm ứng IPTG thích hợp để biểu hiện kháng
nguyên tái tổ hợp RoTAT 1.2 là: nồng độ 0,1 mM, thời gian 5 giờ,
nhiệt độ 30°C.
8 kDa
10 kDa
Hình 3.24. Phản ứng western blot kiểm
tra tính đặc hiệu của protein RoTAT 1.2
Ghi chú: M: Thang protein chuẩn;
1: Kháng nguyên hòa tan của T. evansi với
kháng thể đặc hiệu;
2: Protein RoTAT 1.2 với kháng thể đặc
hiệu của T. evansi;
3: Đối chứng âm
19
3.2.3. Kết quả nghiên cứu chế tạo và thử nghiệm Kit CATT trong
chẩn đoán bệnh tiên mao trùng
3.2.3.1. Kết quả xác định các điều kiện gắn kháng nguyên lên hạt latex
Chúng tôi đã làm thí nghiệm với các yếu tố sau: Mật độ hạt latex:
sử dụng 5 mật độ 0,1; 0,2; 0,3; 0,4 và 0,5. Nồng độ kháng nguyên tái
tổ hợp RoTAT 1.2: 200, 250, 300, 350, 400, 450 và 500 µg/ml.
Huyết thanh dương tính chuẩn được lấy từ trâu gây nhiễm T. evansi,
pha loãng trong dung dịch PBS theo tỷ lệ 1: 16. Huyết thanh âm tính
chuẩn được sử dụng là huyết thanh bào thai bê pha loãng theo tỷ lệ 1:
16. Chúng tôi đã thực hiện các thí nghiệm gắn kháng nguyên RoTAT
1.2 lên hạt latex ở điều kiện nhiệt độ 37ºC trong 2 giờ và điều kiện nhiệt
độ 37ºC trong 30 phút rồi tiếp tục lắc ở 4ºC trong 24 giờ.
Kết quả nghiên cứu cho thấy: Hàm lượng kháng nguyên tái tổ
hợp RoTAT 1.2 tối ưu trong quá trình tạo Kit CATT chẩn đoán bệnh
tiên mao trùng là nồng độ 300 µg/ml và mật độ hạt latex: OD600= 0,3.
Kháng nguyên RoTAT 1.2 gắn lên hạt latex tốt nhất ở điều kiện lắc ở
37ºC trong 30 phút rồi tiếp tục lắc ở 4ºC trong thời gian 24 giờ.
3.2.3.2. Kết quả đánh giá ảnh hưởng của chất nhuộm màu kháng
nguyên đến mức độ ngưng kết
Việc lựa chọn chất nhuộm màu phản ứng là một trong những
bước quan trọng để kết quả phản ứng dễ dàng quan sát được. Các
chất nhuộm màu kháng nguyên dùng trong nghiên cứu là xanh
methylene, xanh malachite và safranin 0,5%.
Kết quả thí nghiệm cho thấy, chất tạo màu phản ứng xanh
methylene cho hiệu quả quan sát tốt nhất và là lựa chọn tối ưu để sử
dụng cho bộ Kit CATT chẩn đoán tiên mao trùng.
3.2.3.3. Kết quả xác định các điều kiện bảo quản kháng nguyên tái tổ hợp
Kháng nguyên tái tổ hợp có bản chất là protein. Vì vậy, để bảo
quản kháng nguyên này cần phải xác định các điều kiện bảo quản
protein, nhằm đảm bảo chất lượng kháng nguyên.
20
Kết quả thử nghiệm lựa chọn các chất ức chế phân giải, chất ổn
định protein và chất diệt khuẩn ở các nhiệt độ - 20oC, 4oC, nhiệt độ
phòng cho phép chúng tôi nhận xét: Điều kiện bảo quản kháng
nguyên tái tổ hợp là: bổ sung EDTA, glycerol, sodium azide 0,02%
và bảo quản trong 12 tháng ở - 20oC, hoặc trong 6 tháng ở 4oC.
3.2.3.4. Xây dựng quy trình sử dụng Kit CATT chế tạo
Chúng tôi đã nghiên cứu và đã xây dựng được quy trình sử dụng
Kit CATT gồm 6 bước sau: Chuyển Kit về nhiệt độ phòng trước khi sử
dụng; Sử dụng pipette, lấy 0,5 ml dung dịch pha loãng huyết thanh vào
ống eppendorf; Lấy 0,1 ml huyết thanh cần chẩn đoán trộn đều vào
ống eppendorf có chứa dung dịch pha loãng huyết thanh, pha loãng
theo tỷ lệ 1/32; Nhỏ lên các vòng tròn trên card phản ứng, mỗi vòng
tròn 20 µl dung dịch kháng nguyên gắn lên hạt latex; Nhỏ các mẫu
huyết thanh cần chẩn đoán, huyết thanh dương tính chuẩn, huyết thanh
âm tính chuẩn lần lượt vào các vòng tròn đã chứa kháng nguyên. Mỗi
vòng tròn nhỏ 20 µl dung dịch huyết thanh (huyết thanh cần chẩn
đoán, hoặc huyết thanh dương tính chuẩn, hoặc huyết thanh âm tính
chuẩn)
Các file đính kèm theo tài liệu này:
- tom_tat_luan_an_nghien_cuu_xac_dinh_ty_le_nhiem_va_che_tao_k.pdf